Las herramientas de detección de hoy

La cromatografía ha reemplazado al microscopio. Separa las moléculas de un extracto en lugar de mirar formas, y ve por tanto lo que un polvo tostado ya no muestra. La revisión de Martins y sus colegas (2018) reporta en el mercado interno brasileño adulteraciones que alcanzan 40 % en peso de maíz, soja, cebada, centeno, caramelo y cascarillas.
El mismo trabajo traza el mapa de los marcadores, porque detectar una carga no basta: para acusarla, hay que nombrarla. Cada ingrediente añadido aporta una molécula que lo delata.
- Glucosa, manosa y fructosalos cereales y las cascarillas.
- Maltosael maíz.
- Rafinosa y estaquiosala soja.
- Gamma-tocoferolel maíz de nuevo, fuera del registro de los azúcares.
- 5-hidroximetilfurfuralla achicoria.
- 16-O-metilcafestol y homoestaquidrinael canephora.
- Los ácidos clorogénicos y las pirazinas volátilesel origen del lote.
Cada familia tiene luego su determinación. Los glúcidos pasan por HPLC, es decir, la cromatografía líquida de alto rendimiento, con detección amperométrica y la norma ISO 11292 como marco. Los límites son allí de 1 a 2,5 ppm, valiendo la parte por millón un miligramo por kilo. La GC-MS en espacio de cabeza, que analiza el aire cargado de compuestos volátiles sobre la muestra calentada, detecta la cebada desde 1 %. La UPLC-MS, por su parte, reduce el análisis a 15 minutos contra 72,6: casi cinco veces más muestras controladas por el mismo tiempo de laboratorio.
El 16-O-metilcafestol, el 16-OMC de los laboratorios, se determina aparte, por cromatografía en capa fina de alto rendimiento. La detección baja a 5 mg/kg y la cuantificación a 20 mg/kg, es decir, menos de 0,9 % de canephora en el paquete. Sobre todo, el marcador sobrevive al tueste y a la fabricación del soluble. Eso es lo que lo hace útil, pues el fraude sobre la especie se esconde justamente ahí, en el molido y en el soluble, donde ya nadie ve el grano.
Martins et al., Food Quality and Safety, 2018, academic.oup.com/fqs/article/2/3/121/5041966; pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/29042111 (J. Chromatogr. A, 2017); contractlaboratory.com, 3 de abril de 2026La RMN se ha convertido en el tamiz de los laboratorios de control. La resonancia magnética nuclear sumerge el extracto en un imán y lee la firma que cada molécula deja en él. El método de Norwich funciona con un imán de mesada a 60 MHz, un aparato que cabe sobre una mesa, en 40 minutos por extracto.
Con diez veces más campo, se ve diez veces más fino. A 600 MHz, Milani y sus colegas (Food Control, 2020) clasifican cafés mezclados con 100 % de éxito. Las cargas probadas eran cebada, maíz, cascarillas, soja, arroz y trigo. La señal del almidón sirve de marcador, puesto que son los cereales añadidos los que lo aportan. Los límites de detección bajan de 0,31 a 0,86 % en tueste medio y oscuro.
El infrarrojo cercano, por su parte, hace la selección en masa. Se ilumina el polvo, se lee la luz que devuelve, sin reactivo ni preparación, por lo tanto sin consumible en cada medición. Couto y sus colegas (Foods, 2021) discriminan así puro y adulterado desde 0,25 % en maíz, cebada, soja, arroz, cascarillas y canephora. Pero solo identifican el adulterante por encima de 10 %, y no más allá de dos mezclados: el método ve que hay algo, no dice qué.
Zhang y sus colegas (Foods, 2025) sacaron el aparato del laboratorio. Su espectrómetro portátil barre de 900 a 1 700 nm. Obtiene 96,9 % de respuestas correctas en cualitativo y 92,3 % en cuantitativo, sobre soja, cebada, achicoria y maíz de 10 a 40 %. Un barrido dura 2,54 milisegundos. Pero el modelo se construyó solo sobre un único arábica de referencia, lo que no dice nada de su desempeño en los demás.
El NIR sigue siendo, por lo tanto, un tamiz, no una prueba. Sus positivos deben confirmarse con la química de referencia.
Bruker, application note NMR in the Detection of Coffee Adulteration, citando a Milani et al., Food Control 2020; Couto et al., Foods 2021, PMC8750839; Zhang et al., Foods 2025, PMC11817766Para el origen, no existe ningún marcador único. Los isótopos estables registran el lugar: en Hawái, Rodrigues y sus colegas (2011) miden en 47 arábicas verdes de cinco regiones el δ18O, más alto a baja altitud y ligado a la lluvia, el δ34S, empobrecido cerca de los volcanes activos, el δ13C y el δ15N, y la relación 87Sr/86Sr, más baja cerca de los volcanes y más alta cerca de las costas; los isótopos solos no separan las cinco regiones, la combinación con el análisis multielemental lo logra, y los autores piden varios años de muestreo.
Detección: de ayer a hoy
| Método | Principio | Lo que detecta | Umbral, duración | Límites |
|---|---|---|---|---|
| Pruebas de cocina (Thurber 1881, AOAC 1922) | Flotación sobre agua fría, coloración, viscosidad, textura | Achicoria, cereales, leguminosas en el molido | Cualitativo, unos minutos, costo nulo | No dice ni la naturaleza ni la dosis; un café sobretostado también se hunde |
| Microscopio (Hassall 1851; Thurber 1881, 140 diámetros) | Vasos espiralados punteados de las raíces, granos de almidón propios de cada cereal | Achicoria, cereales, arvejas, papa | Cualitativo, una preparación por muestra | Ojo ejercitado indispensable; impotente frente a los extractos y a la especie |
| Densidad del extracto al 10 % (McGill, en Ukers 1922) | Densidad 1,00986 para el café puro, 1,02821 para la achicoria; refractometría | Proporción de achicoria | Fórmula lineal, una hora de ebullición | Supone una mezcla binaria |
| Cenizas (Walsh 1894) | Fracción mineral tras la combustión, más elevada en una raíz que en una semilla | Raíces, tierra | Horno y balanza | Umbrales no publicados por Walsh |
| HPLC glúcidos, tocoferoles; GC-MS volátiles (Martins et al. 2018) | Marcadores: glucosa, maltosa (maíz), rafinosa (soja), gamma-tocoferol (maíz), 5-HMF (achicoria) | Cereales, cascarillas, soja, achicoria | 1 a 2,5 ppm en HPLC-PAD; cebada a 1 % en SPME-GC-MS; 15 min en UPLC-MS contra 72,6 min en HPLC-PAD | Patrones costosos, laboratorio equipado |
| 16-O-metilcafestol por HPTLC o HPLC (norma alemana) | Diterpeno casi específico del canephora | Canephora en un «100 % arábica», incluso tostado y soluble | Detección 5 mg/kg, cuantificación 20 mg/kg, es decir, menos de 0,9 % de canephora | Trazas de 16-OMC en ciertos arábicas puros (Gunning 2018), de ahí un umbral de 1 a 2 % |
| RMN 1H, 60 MHz de mesada (Gunning et al. 2018) | Señal del 16-OMC en un extracto al cloroformo | Ídem | Unos 40 min por extracto; 6 muestras sospechosas de 60 | No ve el origen geográfico |
| RMN 1H 600 MHz y quimiometría (Milani et al. 2020) | Señal del almidón y huella global, modelo SIMCA | Cebada, maíz, cascarillas, soja, arroz, trigo | 0,31 a 0,86 % según el tueste; 100 % de clasificación correcta | Instrumento de varios cientos de miles de euros |
| NIR de laboratorio (Couto et al. 2021) | Espectro 4 000-10 000 cm-1, análisis de componentes principales | Maíz, cebada, soja, arroz, cascarillas, canephora | Discrimina puro y adulterado desde 0,25 %; identifica el adulterante por encima de 10 % | Con más de dos adulterantes, ya no los nombra |
| NIR portátil (Zhang et al. 2025) | Espectrómetro 900-1 700 nm, SVM | Soja, cebada, achicoria, maíz de 10 a 40 % | 96,9 % en cualitativo, 92,3 % en cuantitativo; barrido de 2,54 ms | Modelo construido sobre un único arábica; por confirmar con química de referencia |
| ADN (PCR, PCR digital) | Secuencias propias de cada especie | Especie, ciertas variedades | Útil cuando el tueste ha degradado el 16-OMC | ADN fragmentado por el tueste; no cuantifica bien una mezcla |
| Isótopos estables y estroncio (Rodrigues et al. 2011) | δ18O, δ34S, δ13C, δ15N, 87Sr/86Sr reflejan lluvia, altitud, vulcanismo, litoral | Origen geográfico | 47 muestras, cinco regiones de Hawái separadas con el análisis multielemental | Base de referencia por región y por año indispensable |
| Metabolómica GC-MS (Jumhawan et al. 2013) | Huella de ácidos orgánicos y de azúcares | Kopi luwak auténtico contra imitación | Marcadores discriminantes publicados | Pocos laboratorios, ninguna norma |
El ADN identifica la especie y ciertas variedades por PCR o PCR digital cuando el tueste ha degradado el 16-OMC, pero el tueste fragmenta también el ADN. La metabolómica GC-MS proporcionó los marcadores del kopi luwak. Ninguno de estos métodos responde a la pregunta del siglo XIX, que sigue intacta: la del costo del control en relación con el precio de la mercancía, y de quién lo paga.
Rodrigues et al., J. Agric. Food Chem., 2011, PMC3256934; contractlaboratory.com, 3 de abril de 2026; en.wikipedia.org/wiki/Kopi_luwakEn esta láminaLas 17 secciones
- 01Lo que hace posible el fraude
- 02La achicoria, de Brunswick al bloqueo continental
- 03El inventario de los sustitutos
- 04Teñir, pulir, hacer sudar: el fraude sobre el grano verde
- 05Los granos artificiales moldeados
- 06El café molido: la fórmula de las mil libras
- 07El glaseado y sus patentes
- 08Los químicos: Accum, Hassall, el microscopio y el horno
- 09Las leyes, país por país
- 10El sucedáneo se vuelve industria: Postum y los «cereal-fakers»
- 11El gusto fabricado por el hábito
- 12Los ersatz de guerra: 1914, 1939, 1977
- 13El soluble y las mezclas de hoy
- 14El fraude moderno: la especie, el origen, el tanque
- 15Los cafés de animales, o la renta sobre el relato
- 16Las herramientas de detección de hoy
- 17Hoy